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  Aurora 1400A透性肌纖維測試系統

 

加拿大Aurora 1400A

透性肌肉纖維測試系統

產品簡介:

  1400A系統是高性能和高精確度的肌纖維測試系統,讓研究者利用簡要的方法去測量動物透性肌纖維,包括力度、長度、張力與長度的關系,肌小節間隔長度,力與收縮速率的關系,硬度,松弛實驗中的表現等,具有一個可通過軟件程序去控制其擺動的平臺,可全自動化移動特定的浴槽

Aurora 1400A透性肌肉纖維測試系統技術特征:

 精簡和高效的系統:測量單根肌肉纖維,力分辨率達至0.01μN

 具有八個浴槽點可控溫平臺,革命性自動標引且實時 Linux 操作軟件系統

√能夠測量和控制力度、長度和肌小節間隔長度,可提供力-pCa,張力與長度的關系,力與收縮速率的關系,硬度,松弛實驗的測試實驗,測量的力值峰度: 0.5mN100mN

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    Aurora Scientific了解到肌肉纖維研究的廣泛性和應用,於是我們設計了1400A系列系統,讓相關研究者得以針對纖維各種性質進行精確的測量。系統具有可靠且可控溫的測試裝置,裝置備有微米級XYZ位置調節器以調整力傳感器和高速長度操控儀的位置。此外更有一個開創性的功能,裝置具有一個可通過軟件程式去控制其擺動的平臺,平臺上有八個小浴槽,特定的浴槽可以自動轉移至特定的位置,而且移動的序列也能夠預編。

技術原理:

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  1400A系統旨在提高實驗產量并簡化復雜的肌纖維實驗。它們可以在廣泛的應用和測試中提供準確的肌纖維性能測量。使用我們的自動分度浴板進行強制pCa實驗是一件輕而易舉的事情。預先編程鈣濃度和激活/放松順序,讓1400A系統完成剩下的工作。

包括溫度控制設備,其中包括XYZ千分尺級,帶有用于我們的高速長度控制器和力傳感器的內置安裝座。浴缸控制器采用獨特的軟件,配有可編程的運動控制序列器,用于自動浴槽傳送所研究的光纖。還包括一個高速長度控制器,精密力傳感器,數據采集硬件和我們獨特的實時Linux控制和分析軟件。

我們的專用軟件包含一個實驗協議庫,簡化了流程,并可輕松測量力和長度。當與我們可選的HVSL / VSL肌節長度測量系統結合使用時,研究人員可以控制和測量長度,力和肌節長度。這些先進的功能使研究人員能夠完全表征透化纖維,執行所有標準測試,包括力 - pCakTr,長度張力,力 - 速度和硬度。

Aurora Scientific透光纖維測試系統采用耐腐蝕材料制造,可輕松安裝在倒置顯微鏡上進行基本觀察或更復雜的成像。

應用領域:

ü  肌肉生理學家

ü  運動科學家

ü  代謝&心血管學家

ü  生物工程&生物學

ü  基因學家

ü  神經科學家

ü  藥理&生化學家

ü  比較生物學家

ü  老年學家

ü  涉及研究肌肉功能

應用案例

1400A - 耐用系統幫助研究人員研究數千種肌纖維

挑戰

2004年,Hans Degens博士正在研究骨骼肌功能和形態的變化。Degens博士正在尋找使用透化肌纖維作為他的測試樣品,因為他們代表了一個純系統,用于研究沒有偏見和偽影的跨橋梁力學。Degens博士熟悉使用皮膚肌纖維的實驗方法,但缺乏從頭開始構建系統的資源,可以處理測試人類樣品的更高通量需求。

解決方案

Aurora Scientific最近發布了1400A系統。該系統具有自動索引室,可以最大限度地提高光纖吞吐量。該設計還消除了當時通常在設計中發現的任何手動浴槽運動,由此保護敏感換能器免受破損。Degens博士的系統也是第一款采用珀耳帖驅動的溫度控制功能,可以實現非常穩定和精確的鍍液溫度,這對于這些測量非常重要。功能強大的600A數字控制器幾乎允許每個實驗方案都由儀器自己執行。

結果

該系統在過去的11年里一直在Degens博士的實驗室中不斷使用,并幫助他收集許多有關運動生理學,比較生物學和心血管健康等許多有影響和吸引人的研究所需的數據。最初與Aurora Scientific的合作關系也導致了整個肌肉生理學的其他項目。

 

1400A規格參數:

322C-I 高速長度控制器

403A 快速反應和高分辨率的力傳感器

600A全套數據采集和數控系統

802D - 透性肌纖維測試裝置

701C - 高能雙相刺激器

 

文獻列表

Stoehr, Andrea, et al. “Automated analysis of contractile force and Ca2+ transients in engineered heart tissue.” American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology 306.9 (2014): H1353-H1363.

 

Shimkunas, Rafael, et al. “Myofilament dysfunction contributes to impaired myocardial contraction in the infarct border zone.” American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology 307.8 (2014): H1150-H1158.

 

Gineste, Charlotte, et al. “Alterations at the Cross-Bridge Level Are Associated with a Paradoxical Gain of Muscle Function In Vivo in a Mouse Model of Nemaline Myopathy.” PloS One 9.9 (2014): e109066.

 

Klaiman, Jordan M. “Cold acclimation increases cardiac myofilament function and ventricular pressure generation in trout.” The Journal of Experimental Biology 217 (2014): 4132-4140.

 

Bezold, Kristina L. et al. “A gain-of-function mutation in the M-domain of cardiac myosin-binding protein-C increases binding to actin.” Journal of Biological Chemistry 288.30 (2013): 21496-21505.

 

Kohn, Tertius A. and Timothy D. Noakes. “Lion (Panthera leo) and caracal (Caracal caracal) type IIx single muscle fibre force and power exceed that of trained humans.” The Journal of Experimental Biology 216.6 (2013): 960-969.

 

Lee, Eun-Jeong, et al. “Calcium sensitivity and myofilament lattice structure in titin N2B KO mice.” Archives of Biochemistry and Biophysics 535.1 (2013): 76-83.

 

Choi, Seung Jun et al. “Force-Generation Capacity of Single Vastus Lateralis Muscle Fibers and Physical Function Decline With Age in African Green Vervet Monkeys.” Journal of Gerontology Series A: Biological Sciences and Medical Sciences 68.3 (2013): 258-267.

 

Ochala, Julien and Lars Larsson. “Effects of a preferential myosin loss on Ca2+ activation of force generation in single human skeletal muscle fibres.” Experimental Physiology 93.4 (2008): 486-495.

 

 

 

影片

1.       https://www.jove.com/video/52695/measurement-maximum-isometric-force-generated-permeabilized-skeletal

 

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